Entente sur le commerce : ALÉNA/ACI/et les ALE entre Canada et Pérou/Colombie/Panama
Processus de demande des soumissions : Habituellement, une seule entreprise est invitée à soumissionner
Stratégie d'approvisionnement non concurrentielle : Droits exclusifs
Entente sur les revendications territoriales globales : Non
Nom et adresse du fournisseur :
Bio-Rad Laboratories (Canada) Ltd.
1329 Meyerside Drive
Mississauga Ontario
Canada
L5T1C9
Nature des besoins :
Système PCR
6D063-151141
Parker, LaVona
Téléphone : 204-293-0554
Télécopieur : 204-983-7796
Courriel : L••••••••@••••••••.••.ca
Travaux publics et Services gouvernementaux Canada (TPSGC) a l’intention de négocier avec Bio-Rad Laboratories (Canada) Ltd, au nom de l’Agence de la santé publique du Canada, la fourniture d’un (1) système de PCR en temps réel CFX Connect et une option d’achat de (4) systèmes supplémentaires et d’un ordinateur portatif. Tous les fournisseurs intéressés doivent présenter un énoncé de capacités montrant qu’ils satisfont aux exigences obligatoires suivantes :
La section des Virus respiratoires de l’Agence de la santé publique du Canada à Winnipeg (Manitoba) a besoin de systèmes de détection de PCR en temps réel CFX Connect de Bio-Rad fournis et installés pour procéder à la PCR en temps réel. Le laboratoire dispose actuellement de systèmes iCycler iQ5 de Bio-Rad qui servent à détecter et à quantifier avec efficience l’ARN extrait de spécimens cliniques comme les virus SRAS-CoV, MERS-CoV et de la grippe. Le laboratoire dispose maintenant de plus de 20 épreuves diagnostiques en temps réel portant sur tout un éventail de virus respiratoires (coronavirus, y compris SRAS et MERS, métapneumovirus humain, rhinovirus, adénovirus, virus parainfluenza, bocavirus humain, virus respiratoire syncytial et virus de la grippe) et de plus de 15 pour sous-typer l’influenza. Tous les protocoles de PCR en temps réel sont déjà optimisés pour le système iCycler iQ5 (génération précédente de thermocycleurs en temps réel de Bio-Rad) par transfert d’énergie fluorescente de résonance (FRET) à double sonde, ainsi que par la technologie SYBR Green. Les amorces et les sondes pour chaque virus ont été soumises à des tests détaillés visant à déterminer la réactivité croisée, la sensibilité et la spécificité. Tout nouveau système non apparenté mis en service obligerait à procéder à une réoptimisation poussée pour chaque ensemble distinct amorce/sonde.
- Afin d’éviter des processus d’optimisation et de validation qui prennent du temps, ainsi que des dépenses, le système doit être compatible avec les épreuves de PCR en temps réel déjà optimisées et validées dans notre laboratoire sur le système iCycler iQ5. De telles activités de réoptimisation et de validation alourdiraient considérablement notre charge de travail pour de multiples techniciens pendant plusieurs mois, ce qui aurait un effet négatif sur les temps d’analyse des échantillons (depuis la réception jusqu’à la production du rapport au client) dans le cas de nos épreuves existantes de diagnostic/surveillance.
- Le système doit utiliser le format à 96 puits x 0,2 ml et des produits de réaction standard. Les étapes précédant la PCR consistent à extraire l’ARN sur un plateau de 96 puits. Pour éviter la contamination et les erreurs de pipettage et pour gagner du temps au cours de la préparation, on exige le même format à 96 puits afin de permettre le transfert multicanal de l’ARN/ADN modèle sur le plateau de réaction.
- Lesystème doit pouvoir traiter de faibles volumes de réaction de 25 ?l afin de réduire au minimum le volume de l’échantillon d’ARN/ADN requis par réaction, car le volume de l’échantillon original est limité.
- Le système doit utiliser l’excitation des échantillons par DEL personnalisable par l’utilisateur pour éliminer la nécessité d’étalonner, ce qui rend l’utilisation du temps efficace et limite le risque de ne pouvoir procéder à des analyses agréées par l’ISO au moyen d’appareils dont l’étalonnage a pris fin.
- Le système doit pouvoir illuminer des fluorophores sur une vaste plage spectrale (~450 à 600 nm). L’instrument doit pouvoir détecter des fluorophores comme le FAM et le SYBR Green sur une plage spectrale semblable et pouvoir analyser des protocoles basés sur des sondes SYBR Green et Taqman.
- Il doit pouvoir détecter deux fluorophores/cibles génomiques différents au cours d’une même réaction (c. à d. 2 cibles génomiques différentes peuvent être détectées par tube d’échantillon). Afin de réduire le nombre de réactions, le temps d’exécution et le volume d’échantillon utilisé, l’instrument doit pouvoir multiplexer au moins 2 fluorophores par tube de réaction sans compter un colorant de référence passif.
- Il doit pouvoir produire un gradientde température en temps réel couvrant une vaste plage (au moins 20 °C), ce qui permet d’optimiser l’amorce/la sonde/le MgCl2, la détection du polymorphisme mononucléotique (SNP) et d’analyser de multiples ensembles amorce/sonde avec différentes valeursTm dans la même unité de chauffage. Un gradient de température réduit le temps nécessaire pour optimiser le nouvel ensemble amorce/sonde en permettant de faire l’essai de multiples températures de recuit simultanément, ce qui réduit la phase des essais d’un facteur de huit.
- Il doit pouvoir produire des courbes de fusion de concert avec la technologie SYBR Green pour déterminer la spécificité des ensembles d’amorce.
- Il doit pouvoir produire des applications PCR conventionnelles et quantitatives de façon interchangeable sans obliger à reconfigurer le matériel.
- À cause du manque d’espace dans le laboratoire, la plateforme doit être peu encombrante (13 po. l. x 20?po. p. ou moins) et il faut pouvoir utiliser de multiples appareils avec une seuleinterface d’ordinateur portable.
- L’appareil doit être relativement léger (
